Fixering är bearbetning av ett prov avsett för mikroskopi för att så långt som möjligt bevara deras strukturer i oförändrat tillstånd [1] . Annars, under verkan av sina egna enzymer, verkan av förruttnande organismer, och av andra skäl, blir provet olämpligt för forskning. Det används inom histologi och mikrobiologi , patologisk anatomi . De vanligaste kemiska metoderna för fixering; inom mikrobiologi används värmefixering ofta.
Fixering av provet föregår dess färgning, med undantag för livsviktig färgning . Inom histologi är fixering steget omedelbart efter provtagning.
Det finns inga universella fixatorer som är lika lämpliga för alla ändamål. Valet av fixativ lösning baseras på dess fördelar och nackdelar för att arbeta med en viss typ av material och lämplighet för en viss mikroskopisk undersökningsmetod.
Den vanligaste typen av fixativ lösning . Enkelt, billigt, relativt låg risk för arbetaren. Vattenhaltiga lösningar av formaldehyd används i ren form och som en del av blandningar med andra ämnen, till exempel med ättiksyra . Nackdelen med formalinfixativ är överdriven vävnadskomprimering [2] . Dessutom, när man använder rent formalin, är en vit fällning (kristaller av myrsyra ) ofta möjlig. Därför används oftare "buffrat" neutralt formalin.
Ren etylalkohol används sällan eftersom det kan skrynkla materialet.
Föremål fixerade med blandningar baserade på pikrinsyra är instabila i vatten, så efter fixering överförs föremålet till 70% alkohol. Efter fixering får föremålet en gul färg, vilket vanligtvis inte stör arbetet.
Sublimatbaserade fixativ fungerar långsamt. används inom histologi. Bra nukleära fixativ [4] .
Fixativ baserad på osmisk syra förändrar lite strukturen hos vävnader och celler. Bra kärnfixeringsmedel. De färgar fett i en mörk färg [5] . I elektronmikroskopi används det som kontrastmedel. Extrem toxicitet och höga kostnader begränsar användningen av osmiumfixativ.
Histologi | |
---|---|
Histologiska metoder | |
Relaterade artiklar |